深圳真瑞生物科技有限公司
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產(chǎn)品編號:AP006 檢測方法:熒光PCR 檢測樣品:血液,糞便或泄殖腔式子 規(guī)格:25T/50T
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【產(chǎn)品名稱】
通用名稱:禽流感病毒H7N9亞型檢測試劑盒(雙色實時熒光PCR法)
英文名稱:Avian Influenza Virus H7N9 subtype Detection Kit (Dual channel Real-Time PCR Method)
【包裝規(guī)格】 25頭份/盒 & 50頭份/盒
【預期用途】
本試劑盒利用實時熒光PCR原理,定性檢測禽流感病毒H7N9亞型(AIV-H7N9),對AIV-H7N9引起的禽流感的診斷和監(jiān)控具有重要指導意義。
【檢驗原理】
本試劑盒針對AIV-H7N9高度保守區(qū)域設計特異性引物和探針,在反應體系中含AIV-H7N9基因組模板的情況下,PCR反應得以進行并釋放熒光信號。利用儀器對PCR過程中相應通道的信號強度進行實時監(jiān)測和輸出,實現(xiàn)檢測結果的定性分析。
【主要組成成份】
序號 | 組成 | 25頭份/盒 | 50頭份/盒 |
1 | AIV-H7N9 RT-PCR反應液 | 375 μL×1管 | 750 μL×1管 |
2 | AIV-H7N9逆轉(zhuǎn)錄酶 | 50 μL×1管 | 100 μL×1管 |
3 | AIV-H7N9 Taq酶 | 75 μL×1管 | 150 μL×1管 |
4 | AIV-H7N9陽性對照 | 40 μL×1管 | 40 μL×1管 |
5 | AIV-H7N9陰性對照 | 40 μL×1管 | 40 μL×1管 |
6 | 說明書 | 1份 | 1份 |
注:陰性對照為禽類基因組DNA,陽性對照為失去活性的AIV-H7N9病毒cDNA。
【儲存條件及有效期】避光-20℃以下保存,避免反復凍融,有效期12個月。
【適用儀器】ABI 系列、Bio-Rad系列、Agilent Stratagene MX系列 、Roche LightCycler R480、Cepheid SmartCycler、Rotor-Gene系列、杭州博日系列等多通道實時熒光定量PCR儀。
【樣本要求】
1.樣品取咽喉拭子和泄殖腔拭子,采集方法如下:
咽喉拭子,采取時要將拭子深入喉頭及上顎裂來回刮3次~5次,取咽喉分泌液;將咽喉拭子放人盛有1.0mL生理鹽水的離心管中備用,應避免標本間交叉污染。
2.標本收集后可立即檢測;若不能立即檢測,可置于2~8℃冷藏過 夜保存;如需長期保存,標本應凍存于-80℃,避免反復凍融。
【檢驗方法】
1. 試劑準備(試劑準備區(qū))
(1)從冰箱中取出試劑盒, 從試劑盒中取出實驗所需試劑,充分融化混勻并瞬時離心以去除管壁附著液體。
(2)核算當次實驗所需要的反應數(shù)(n),并根據(jù)如下表所示反應體系計算當次實驗所需要的各種試劑量。
n =陰性對照數(shù)(1T)+陽性對照數(shù)(1T)+誤差預留量(1T)+樣本數(shù)
單反液配制表(每頭份) | RT-PCR反應液 | 15.0 μL |
逆轉(zhuǎn)錄酶 | 2.0 μL | |
Taq酶 | 3.0 μL |
(3)在無菌離心管中加入上述試劑,充分混勻后瞬時離心。按照20 μL/管分裝量將試劑分裝至PCR反應管。
2.樣本準備(樣本處理區(qū))
用QIAGEN、Roche公司RNA提取試劑盒提取RNA,具體操作按照其試劑盒說明書操作。
3.加樣
在上述制備好的PCR反應管中分別加入處理好的待測標本RNA各5 μl、終體積25 μl/管,蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心,轉(zhuǎn)移到PCR儀器上。
根據(jù)需要,在上述準備好的PCR反應管中分別加入陰性對照品以及陽性對照品各5 μl,終體積為25 μl/管,蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心,轉(zhuǎn)移到PCR儀器上。
4. PCR(PCR擴增區(qū))
(1)取樣本處理區(qū)準備好的PCR反應管,放置在實時熒光定量PCR儀樣品槽相應位置,并記錄放置順序。
(2)按下表設置儀器核酸擴增相關參數(shù)進行PCR擴增。
反應體積 | 25 μL | 通道選擇 | FAM通道采集 AIV-H7熒光信號 HEX通道采集 AIV-N9熒光信號 |
PCR 反應 條件 | 步驟 | 條件 | 循環(huán)數(shù) |
反轉(zhuǎn)錄 | 42℃:10分鐘(min) | 1 | |
預變性 | 95℃:3分鐘(min) | 1 | |
預擴增 | 95℃:5秒(s) | 5 | |
55℃:40秒(s) | |||
PCR擴增 | 95℃:5秒(s) | 40 | |
55℃:40秒(s) (此階段結束時采集熒光信號) |
注:ABI系列熒光PCR儀在設置時不選ROX校正,設置淬滅基團選擇None
【參考值(參考范圍)】
1.試劑盒有效性判定:
(1)陽性對照:有典型S型擴增曲線或Ct值≤35。
(2)陰性對照:Ct值>38或無Ct值,線形為直線或輕微斜線,無指數(shù)增長期。
2.標本結果判定:
(1)陽性:標本檢測結果Ct值≤35或有明顯指數(shù)增長期。
(2)可疑:標本檢測結果Ct值在35~38范圍內(nèi)。此時應對標本進行重復檢測,如重復實驗結果Ct值仍在35~38范圍內(nèi),有明顯指數(shù)增長期,則判定為陽性,否則為陰性。
(3)陰性:標本檢測結果Ct值>38或無Ct值。
【檢驗結果的解釋】
通道及檢測結果 | 標本檢測結果解釋 | |
FAM | HEX | |
+ | + | 樣本中檢測出AIV-H7和AIV-N9 |
+ | - | 樣本中檢測出AIV-H7,未檢測出AIV-N9 |
- | + | 檢測出AIV-N9,未檢測出AIV-H7。 |
- | - | 未檢測出AIV-H7和AIV-N9。 |
【檢驗方法的局限性】
1. 當檢測樣本中被檢核酸濃度低于本試劑盒的最低檢出限時可能會發(fā)生假陰性的結果。
2. 被檢樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中操作方式不當容易造成RNA降解而產(chǎn)生假陰性結果。
3. 樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中發(fā)生交叉污染,則容易得到假陽性結果。
【產(chǎn)品性能指標】 產(chǎn)品的最低檢出限為102 Copies/mL,產(chǎn)品CV值≤5%。
【注意事項】
1. 整個檢測過程應嚴格按照本說明書要求分別在試劑準備區(qū)、樣本處理區(qū)和PCR擴增區(qū)進行操作,各區(qū)實驗服、儀器、耗材應獨立使用,不能混用;實驗用吸頭采用帶濾芯吸頭;樣本處理區(qū)應配有生物安全柜,樣本處理在生物安全柜中進行操作;三個區(qū)應該配有紫外線殺菌裝置。
2. 為避免RNA降解,樣本處理過程應在0-4℃條件下操作,且完成實驗后立即上機檢測;樣本處理過程中使用的器具耗材應經(jīng)過無核酶處理。
3. 每次實驗應該設置陰、陽性對照。
4. 試劑盒所有試劑在使用前應該在常溫下充分融化混勻,并應瞬時離心。
5. 試劑盒內(nèi)所配陰性和陽性對照在第一次使用前應全部轉(zhuǎn)移至標本準備區(qū),并單獨存放。
6. 為防止熒光干擾,應避免裸手直接接觸PCR反應管,并應避免在PCR反應管上進行任何標記。
7. 儀器擴增相關參數(shù)應按照本說明書相關要求進行設置;不同批號試劑不能混用。
8. ABI系列熒光定量PCR儀參數(shù)設置中不選ROX校正,淬滅基因選擇None。
9. 實驗過程中產(chǎn)品的廢棄物應該進行無害化處理后方可丟棄。